Gezielte Genomeditierung

Generator für CRISPR-Cas9-Diagramme

Erstelle klare Abbildungen zu Mechanismen der Genomeditierung. Stelle das Aufschmelzen der Ziel-DNA, die Hybridisierung des sgRNA-Spacers, die Spaltung durch Cas9-Endonukleasedomänen und Reparaturwege für Doppelstrangbrüche dar.

sgRNA-Spacer und -GerüstErkennung des PAM 5′-NGGEditierbare SVG- und PPTX-DateienWissenschaftliche Publikationsqualität

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So funktioniert es

CRISPR-Cas9-Diagramme in 3 Schritten erstellen

Erstelle Entwürfe für Abbildungen der Genomeditierung mit Nukleasedomänen, Hybridisierung an der Zielsequenz und nachgelagerten DNA-Reparaturwegen.

Guide-RNA, PAM und Ziellokus festlegen

Gib die Cas-Enzymvariante (SpCas9, SaCas9, Cas12a), die 20-nt-Spacersequenz, das PAM-Motiv (5′-NGG) und den genomischen Ziellokus an.

Nuklease-Spaltung und Reparaturmechanismen prüfen

Prüfe HNH- und RuvC-Spaltpfeile, die Größe der R-Loop-Struktur sowie nachgelagerte NHEJ-Knock-out- oder HDR-Knock-in-Reparaturwege.

Bearbeitbare Vektoren für die Weiterverwendung exportieren

Lade SVG-Grafiken mit Ebenen oder PowerPoint-Folien (PPTX) herunter, um Nukleotidschrift, Proteinfarben und Panelanordnung anzupassen.

Beispiele für CRISPR-Cas9-Diagramme

Entdecke bearbeitbare wissenschaftliche Diagramme zur Cas9-Ribonukleoproteinstruktur, PAM-Erkennung, Nuklease-Spaltung und Baseneditierung.

Cas9-RNP-Komplex und Domänenstruktur

Zweilappige Cas9-Endonuklease mit REC-Erkennungslappen, katalytischem NUC-Lappen, Brückenhelix und Interaktionen mit dem sgRNA-Gerüst.

Cas9 RNP

PAM-Erkennung und R-Loop-Bildung

Die Bindung an das Protospacer-adjacent-Motiv (PAM 5′-NGG) löst das lokale Aufschmelzen der DNA und die Hybridisierung des 20 Nukleotide langen Guide-Spacers aus.

5'-NGG-3' PAM

Spaltung durch HNH- und RuvC-Endonukleasen

Koordinierte Spaltung der Ziel- und Nichtziel-DNA-Stränge drei Basenpaare vor dem PAM, die einen glatten Doppelstrangbruch erzeugt.

HNH

NHEJ-Knock-out und HDR-Knock-in-Reparatur

Zelluläre DNA-Reparaturwege im Vergleich: fehleranfällige NHEJ-Indels und präziser, vorlagengeleiteter Knock-in durch HDR.

NHEJ

Systeme für Base Editing und Prime Editing

Konstruierte Nickase-Fusionen, darunter Cytidin-/Adenin-Baseneditoren (CBE/ABE) und Prime-Editoren mit reverser Transkriptase (PE2/PE3).

Base Editor

In-vivo-Übertragung und Validierung

Vergleich translationaler Übertragungswege mit AAV-Vektoren und Lipidnanopartikeln sowie Off-Target-Validierung mittels NGS und GUIDE-seq.

AAV
Warum SciDraw

Warum Forschende SciDraw für CRISPR-Diagramme wählen

SciDraw kann beim Entwurf einer wissenschaftlichen Grafik helfen. Prüfen Sie vor der Verwendung alle Beschriftungen, Beziehungen und Aussagen anhand Ihrer Quelle.

Anforderung im Arbeitsablauf
SciDraw AI
Allgemeine Bild-KI
Präzise zweilappige Proteinstruktur
Stelle REC-Erkennungslappen, katalytischen NUC-Lappen und Brückenhelix dar und vergleiche die Struktur mit veröffentlichten Kryo-EM-Daten.
Zeigt unstrukturierte Formen statt klar getrennter REC-/NUC-Loben und sgRNA-Haarnadeln.
Präzise PAM- und Spaltkoordinaten
Berücksichtige die 5′-zu-3′-Polarität der DNA-Stränge und markiere die Spaltstellen 3 bp vor dem PAM-Motiv 5′-NGG.
Platziert Schnittstellen zufällig ohne 5'-NGG-3'-PAM-Ausrichtung oder R-Loop-Strangtrennung.
Vektor- und PowerPoint-Präsentationen exportieren
Lade skalierbare SVG-Dateien oder bearbeitbare PPTX-Folien herunter, um Nukleotidbeschriftungen, Farben und Linienstärken anzupassen.
Erzeugt statische Pixelbilder, in denen Nukleotidsequenzen nicht korrigiert werden können.
Akademische und kommerzielle Nutzungsrechte
Die Nutzungsrechte hängen vom SciDraw-Tarif und der Lizenz ab und unterliegen geltendem Recht sowie den Rechten Dritter. Prüfe vor der Veröffentlichung die Bedingungen der Zeitschrift.
Unklare Lizenzbedingungen, die Angaben in Manuskripten und Anträgen erschweren.
Praxisleitfaden

Praxisleitfaden zur Gestaltung von CRISPR-Cas9-Mechanismusabbildungen

Nutzen Sie Grundsätze der wissenschaftlichen Visualisierung für klare und lesbare Diagramme. Prüfen Sie deren Genauigkeit und die Vorgaben der Zeitschrift.

Diagramm zur PAM-Erkennung und DNA-Aufschmelzung mit 5′-NGG-Stelle und R-Loop-Bildung

1. Aufbau der Cas9-Endonuklease und Guide-RNA

CRISPR-Cas9, ein Typ-II-CRISPR-System aus Streptococcus pyogenes, arbeitet mit einer koordinierten Ribonukleoprotein-Maschinerie (RNP). Stelle bei wissenschaftlichen Abbildungen die einzelnen Strukturkomponenten klar dar:

  • Zweilappige Organisation: Das Cas9-Polypeptid faltet sich in zwei Hauptlappen, die durch eine positiv geladene Brückenhelix getrennt sind: den alpha-helikalen Erkennungslappen (REC) und den Nuklease-Lappen (NUC).
  • Katalytische NUC-Domänen: Der NUC-Lappen enthält zwei Endonukleasezentren: HNH spaltet den komplementären Ziel-DNA-Strang, RuvC den nicht-komplementären verdrängten Strang.
  • Struktur der Einzel-Guide-RNA (sgRNA): Die konstruierte sgRNA besteht aus einer zielsequenzspezifischen 20-Nukleotid-Spacersequenz und einem über 80 Nukleotide langen tracrRNA-Gerüst mit drei Stammschleifen.
  • PAM-Erkennung: Die C-terminale PAM-interagierende Domäne (PID) bindet das Protospacer-adjacent-Motiv 5′-NGG-3′ des Nichtzielstrangs und leitet das lokale Aufschmelzen der Doppelhelix ein.
Diagramm zum Vergleich von NHEJ- und HDR-Reparaturwegen: Indel-Knock-out und vorlagengeleiteter Knock-in

2. Reparatur von DNA-Doppelstrangbrüchen darstellen: NHEJ und HDR

Ein umfassendes CRISPR-Mechanismusdiagramm zeigt typischerweise das zelluläre Schicksal des Ziellokus nach Cas9-induzierten Doppelstrangbrüchen (DSBs):

  • Nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ): Überwiegt in nicht teilenden Zellen und somatischen Säugetierzellen. Ku70/Ku80 und DNA-PKcs verknüpfen stumpfe Enden direkt; dabei können kleine Insertionen oder Deletionen (Indels) entstehen, die durch eine Leserasterverschiebung einen Gen-Knock-out bewirken.
  • Homologiegesteuerte Reparatur (HDR): Ist vorwiegend in der S- und G2-Phase aktiv. Rad51 unterstützt die Stranginvasion mithilfe einer exogenen Donorvorlage (ssODN oder doppelsträngiges Plasmid) und ermöglicht einen präzisen Sequenzaustausch oder das Einfügen eines Tags.
  • Alternative Technologien: Unterscheide die DSB-Spaltung von Nickase-vermitteltem Base Editing (CBE/ABE-Desaminierung) und Prime Editing (Synthese durch reverse Transkriptase anhand einer pegRNA), bei denen Doppelstrangbrüche vermieden werden, um Indels zu reduzieren.
Diagramm der Doppelspaltung durch HNH- und RuvC-Domänen

3. CRISPR-Abbildungen in begutachteten Manuskripten dokumentieren

Bei Abbildungen für Fachzeitschriften sollten Zielsequenzen, Off-Target-Kontrollen und der Einsatz von Software präzise angegeben werden:

  • Sequenzbeschriftung: Markiere die Orientierung von 5′ nach 3′ auf beiden DNA-Strängen und hebe das genaue PAM-Trinukleotid mit einer Kontrastfarbe hervor.
  • Spaltstelle kennzeichnen: Markiere die erwartete Spaltebene zwischen Position −3 und −4 relativ zum PAM mit einer senkrechten Linie oder einer gestrichelten Linie.
  • Angabe im Methodenteil: Du kannst schreiben: „CRISPR-Cas9-Mechanismusabbildungen und Zielschemata wurden mit SciDraw AI (SciDraw, https://scidraw.org) erstellt und anhand unserer Sequenzierungsdaten des Ziellokus überprüft.“
  • Reproduzierbarkeit prüfen: Stelle sicher, dass die dargestellten sgRNA-Spacersequenzen mit den Oligonukleotiden in den ergänzenden Methodentabellen übereinstimmen.
Diagramm des Cas9-Ribonukleoproteinkomplexes mit REC- und NUC-Lappen sowie sgRNA

4. Export, Layout und Anpassung für Zeitschriften und Vorträge

Eine einzelne Mechanismus- oder Signalwegabbildung wird oft mehrfach genutzt – vom zweispaltigen Manuskriptpanel bis zur 16:9-Konferenzfolie oder einem Drittmittelantrag. Planen Sie die visuelle Hierarchie so, dass Beschriftungen in jedem Format lesbar bleiben:

  • Exportieren Sie geschichtete SVG-Dateien oder native PPTX-Folien, um Schriftgrößen, Pfeilstärken und Farbpaletten anzupassen.
  • Verwenden Sie eine einheitliche Farbcodierung über alle Teilabbildungen hinweg, damit Auslöser, aktive Komplexe und Inhibitoren sofort erkennbar sind.
  • Prüfen Sie alle Gensymbole, Phosphorylierungsstellen und Kausalpfeile vor der Einreichung anhand Ihrer Primärdaten.

Einfache Preise für wissenschaftliche Abbildungen

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Erfahrungsberichte

Warum Forscher SciDraw in ihrem Arbeitsablauf behalten

Forscher, Doktoranden und Pädagogen erzählen, wie SciDraw ihnen dabei hilft, schneller wissenschaftliche Abbildungen, wissenschaftliche Diagramme, grafische Zusammenfassungen und klarere Unterrichtsvisualisierungen zu erstellen.

Für eine Vorlesung über Pflanzenzellen musste ich die Chloroplasten und Vakuolen hervorheben, ohne eine alte Folie neu aufbauen zu müssen. SciDraw lieferte mir ein nützliches wissenschaftliches Abbildungs-Layout, das nach nur wenigen Bearbeitungen der Beschriftungen in mein Dia-Deck aufgenommen wurde.

Dr. Helen Vance

Dr. Helen Vance

Professor für Zellbiologie

Wenn ein Student nach einem Beispiel für ein Kraftdiagramm fragt, das über das Lehrbuch hinausgeht, öffne ich SciDraw, anstatt eines auf einer Folie neu zu zeichnen. Es ist der wissenschaftliche Diagrammgenerator, zu dem ich zuerst greife, dann überprüfe ich schnell jeden Vektor.

Dr. Javier Ortega

Dr. Javier Ortega

Dozent für Physik

Bei Förderanträgen verwenden wir SciDraw, um uns auf das Diagramm des Versuchsaufbaus zu einigen, bevor irgendjemand mit dem Feilen der wissenschaftlichen Abbildungen beginnt. Es hat das Hin und Her reduziert und dem Team vom ersten Tag an ein gemeinsames Bild gegeben.

Dr. Devendra Verma

Dr. Devendra Verma

Leiter eines Forschungslabors

Ich kann ein paar biologische Signalwegdiagramme für Studiennotizen vergleichen, bevor ich mich für eines entscheide.

Minh Nguyen

Minh Nguyen

Masterstudent der Naturwissenschaften

Für meine Dissertation beginne ich den Prozess vom Manuskript zur Abbildung mit neuronalen Pfad- und Synapsenlayouts in SciDraw. Es gibt mir eine starke erste Komposition, sodass ich Illustrator-Zeit für die Details aufwenden kann, die wichtig sind.

Dr. Ananya Rao

Dr. Ananya Rao

Doktorand der Neurowissenschaften

Die erste wissenschaftliche Zeichnung brachte unsere Designüberprüfung der fraktionierten Destillation sofort in Bewegung.

Dr. Marcus Davis

Dr. Marcus Davis

Leiter Chemieingenieurwesen

Wenn das Archivbild nicht zum Klimathema dieser Woche passt, erstelle ich schnell ein Diagramm in SciDraw. Es gibt der Klasse ein Bild, das zur Diskussion passt, und ich kann die Beschriftungen an ihr Niveau anpassen.

Prof. Mei-Ling Zhao

Prof. Mei-Ling Zhao

Lehrkraft für Umweltwissenschaften

Häufig gestellte Fragen

Häufige Fragen zu CRISPR-Cas9-Diagrammen